ESQUEMA
viernes, 15 de mayo de 2015
miércoles, 13 de mayo de 2015
REFLEXIÓN 3ª EVALUACIÓN
Esta 3ª evaluación se ha pasado muy rápida. No he tenido mucho tiempo para dedicarle a la asignatura, pero si he cumplido algunos propósitos que dije en las otras evaluaciones como llevar la asignatura más al día, aun que no lo he cumplido cien por cien. Este trimestre ha sido muy intenso y muy corto, pero aun así me he esforzado y he trabajado, aun que no lo suficiente, creo que puedo dar más de mi.
martes, 28 de abril de 2015
TEMA 17: Microorganismos: enfermedades y biotecnología
Este tema es muy interesante, ya que podemos estudiar todo lo que tiene que ver con los microorganismos, desde enfermedades a biotecnología. Es un tema sencillo y poco complicado de entender. Mi compañero Jorge y yo nos propusimos explicarlo a nuestros compañeros. Aquí dejo las diapositivas que utilizamos para ello.
https://prezi.com/omhzctna7nrh/los-microorganismos/#
miércoles, 15 de abril de 2015
domingo, 22 de febrero de 2015
PRÁCTICA EN LA UNIVERSIDAD DE DESAMPARADOS
EXTRACCIÓN DEL ADN
Esta práctica consiste en la extracción del ADN de una planta. Para ello es necesario varios procedimientos que ahora explicaré. La práctica la hicimos en pareja, yo la hice con Isabel Sáez. No es complicada, aun que se requiere precisión y atención.
En primer lugar, ponemos una hojita (muestra) en un tubo eppendorf.
El siguiente paso es incorporar SDS a nuestra mezcla y agitar.
Seguidamente incubamos a temperatura ambiente durante 5 minutos. Debemos incubar para que se rompan completamente los tejidos de la pared celular para poder acceder a la membrana plasmática.
Después de incubar, metemos los tubos a la centrifugadora. Este paso se realiza para separar muy bien la pared celular y que precipite.
Terminado el paso de centrifugar, extraemos el líquido que queda por encima del precipitado, con mucho cuidado de no extraerlo también. Ese líquido extraído, lo pasamos a otro tubo y le añadimos 300 ml de etanol del 70% y le damos unos golpecitos para que se mezcle. Volvemos a centrifugar.
Al terminar el centrifugado, tiramos el alcohol y nos queda en el fondo el ADN. Le echamos agua estéril y ya podemos ver el ADN, aun que en esta imagen no se aprecia muy bien.
En primer lugar, ponemos una hojita (muestra) en un tubo eppendorf.
A continuación, le añadimos 250ml de tampón a nuestra muestra, y con un palito machacamos muy bien hasta que no queden restos de hoja. Con esto rompemos los tejidos de la pared celular.
Seguidamente incubamos a temperatura ambiente durante 5 minutos. Debemos incubar para que se rompan completamente los tejidos de la pared celular para poder acceder a la membrana plasmática.
Después de incubar, metemos los tubos a la centrifugadora. Este paso se realiza para separar muy bien la pared celular y que precipite.
Terminado el paso de centrifugar, extraemos el líquido que queda por encima del precipitado, con mucho cuidado de no extraerlo también. Ese líquido extraído, lo pasamos a otro tubo y le añadimos 300 ml de etanol del 70% y le damos unos golpecitos para que se mezcle. Volvemos a centrifugar.
Al terminar el centrifugado, tiramos el alcohol y nos queda en el fondo el ADN. Le echamos agua estéril y ya podemos ver el ADN, aun que en esta imagen no se aprecia muy bien.
lunes, 16 de febrero de 2015
martes, 3 de febrero de 2015
miércoles, 28 de enero de 2015
martes, 13 de enero de 2015
TEMA 9: La membrana plasmática. Orgánulos membranosos
MITOCONDRIA
CLOROPLASTO
DIFERENCIAS ENTRE MITOCONDRIA Y CLOROPLASTO
TRABAJO EN GRUPO
TRABAJO EN GRUPO
Este trabajo es realizado por Rocío Almira, Victoria Illán, Mónica Núñez y yo. En él explicamos en forma de esquema y muy resumida la función, estructura, partes, localización y origen de los cloroplastos.
lunes, 5 de enero de 2015
PRÁCTICA DE LOS GLÚCIDOS
PRÁCTICA EN GRUPO
Esta práctica consiste en el reconocimiento de los glúcidos mediante una reacción. Para ello se necesitaban 10 tubos de ensayo y cada uno de ellos con un glúcido diferente.
Empezamos por el tubo numero 1. Este tubo contenía 3ml de la disolución de glucosa. Nosotros sabemos que la glucosa es un monosacárido y por lo tanto si reduce el reactivo de fehling, por lo tanto, cuando lo echemos con la glucosa y lo calentemos, observamos como cambia de un color azul oscuro a un rojo anaranjado. En la foto podemos observar el tubo 1( el de la izquierda) con un color azul, y después de 3 minutos aproximadamente al baño maría, comprobamos que ha cambiado de color en la segunda y tercera imagen.
En el tubo 2, teníamos que añadir 3 ml de sacarosa. Como hemos aprendido este trimestre, la sacarosa es un monosacárido pero no tiene poder reductor, ya que al estar unidos los dos carbonos anoméricos, no queda ninguno libre. Por lo tanto, lo que teníamos que observar aquí, es que aun que le hachemos reactivo de fehling no cambiaría de color después de haberlo calentado. Y lo comprobamos, quedaba un color azul verdoso, pero no llegaba a cambiar.
La disolucion del tubo 3 era de lactosa, que como ya sabemos es un disacárido formado por una galactosa y una glucosa. En este tubo echamos 1 ml de reactivo de fehling para comprobar si cambia o no de color. Y efectivamente, cambió de color, porque como hemos estudiado, la lactosa si reduce el reactivo de fehling. En la primera imagen vemos como tiene ese color azul intenso,y en la segunda, después de estar al baño maria unos minutos, podemos ver el color rojo anaranjado que ha quedado.
En el tubo 4 tenemos 3 ml de maltosa, que como ya hemos estudiado, es un disacárido formado por dos glucosas. Y como ya sabemos, la maltosa si tiene poder reductor, es decir, reduce el reactivo de fehling. Así que comprobamos que esto era cierto y aquí tenemos unas imágenes.
El tubo 5 contenía zumo de uva, y en estas imágenes podéis observar ya el cambio de azul intenso a este rojo anaranjado. Para llegar a ese color, tenemos que echar reactivo de fehling y calentarlo al baño maría.
En el tubo 6 teníamos 3 ml de azúcar de caña, que pasara lo mismo que en los anteriores casos, al añadir reactivo y calentar, cambia de color azul a un rojo anaranjado. En esta imagen ya se ve finalizado.
Leche entera es lo que había que añadir al tubo número 7, y después se le añadía reactivo de fehling y se calentaba unos minutos, y el resultado fue un cambio de color para observar que si que habían glúcidos. Aquí tenemos la foto final.
En el tubo 8 había que poner cerveza, y ocurría lo mismo que en los casos anteriores, reactivo y calor, y obteníamos un cambio de color. En esta imagen lo podemos apreciar.
En el tubo 9 teniamos agua destilada.
En el tubo 10, el mas complejo, teníamos que poner 3ml de sacarosa, porque teníamos que conseguir que cambiara de color gracias al acido clorhídrico. Por lo tanto, lo que teníamos que hacer era echar la sacarosa con el acido clorhídrico y calentar muy bien para que se mezclara. Cuando estaba ya caliente teníamos que dejarlo enfriar para poderle echar el reactivo de fehling y que hiciera efecto. Cuando estaba completamente frío, le añadimos el reactivo y calentamos varios minutos. Y efectivamente cambio e color. Aquí tenemos varias fotos.
Y por ultimo, voy a poner varias fotos con varios reactivos:
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